Nieinwazyjne badanie zakażeń pasożytem Polychromophilus w populacjach nietoperzy w Serbii przy użyciu much nietoperzy | Pasożyty i wektory
Garnham PCC. Pasożyty malarii i inne hemosporydia. Londyn: Blackwell Scientific; 1966.
Google Scholar
Perkins SL. Wielu partnerów malarii: przeszłość, teraźniejszość i przyszłość systematyki rzędu Haemosporida. J Parazytol. 2014;100:11–25.
Perkins SL, Schaer J. Nowoczesna menażeria malarii ssaków. Trendy Parazytol. 2016;32:772–82.
Witsenburg F, Clément L, López-Baucells A, Palmeirim J, Pavlinić I, Scaravelli D i in. Jak porusza się hemosporydowy pasożyt nietoperzy: porównanie struktury genetycznej pasożyta, wektora i żywiciela. Mol Ecol. 2015;24:926–40.
Witsenburg F, Salamin N, Christe P. Ewolucyjne przełączniki żywiciela polichromofil: wielogenowa filogeneza rodzaju malarii nietoperzy sugeruje drugą inwazję ssaków przez pasożyta hemosporydiów. Malar J. 2012;11:53.
Szentiványi T, Markotter W, Dietrich M, Clément L, Ançay L, Brun L, et al. Ochrona żywicieli przez ich pasożyty: nadzór molekularny mikroorganizmów przenoszonych przez wektory u nietoperzy przy użyciu ektopasożytniczych much nietoperzy. Pasożyt. 2020;27:72.
Sándor AD, Péter Á, Corduneanu A, Barti L, Csősz I, Kalmár Z, et al. Szeroka dystrybucja i różnorodność hemosporydów związanych z malarią (polichromofil spp.) u nietoperzy i ich pasożytów zewnętrznych w Europie Wschodniej. Mikroorganizmy. 2021;9:230.
Gardner RA, Molyneux DH. Polichromofil murinus: pasożyt malarii nietoperzy: historia życia i badania ultrastrukturalne. Parazytologia. 1988;96:591–605.
Komputer firmy Garnham. Zoogeografia ks polichromofil i opis nowego gatunku gregaryny (Lankesteria galliardi). Porównanie Ann Parasitol Hum. 1973;48:231–42.
Megali A, Yannic G, Christe P. Choroba w ciemności: charakterystyka molekularna Polichromofil murinus w strefie umiarkowanej nietoperze ujawniły ogólnoświatową dystrybucję tej choroby podobnej do malarii. Mol Ecol. 2011;20:1039–48.
Witsenburg F, Schneider F, Christe P. Cechy epidemiologiczne pasożyta podobnego do malarii Polichromofil murinus w nietoperzu Daubentona Myotis daubentonii. Wektory pasożytów. 2014;7:566.
Hutson AM. Kedy, płazińce i muchy nietoperze. Diptera, Hippoboscidae i Nycteribiidae. W: Fitton MG, redaktor. Podręczniki do identyfikacji brytyjskich owadów. Londyn: Królewskie Towarzystwo Entomologiczne w Londynie; 1984. s. 44.
Dick CW, Patterson BD. Muchy nietoperzy: obligatoryjne ektopasożyty nietoperzy. W: Morand S, Krasnov BR, wyd. Mikrossaki i makropasożyty. Tokio: Springera; 2006. s. 179–94.
Dick CW, Patterson BD. Wbrew wszelkim przeciwnościom: wyjaśnienie wysokiej specyficzności żywiciela w pasożytach podatnych na rozprzestrzenianie się. Int J Parazytol. 2007;37:871–6.
Lourenço SI, Palmeirim JM. W jaki sposób ektopasożytnicze nycteribiidy lokalizują swoich żywicieli nietoperzy? Parazytologia. 2008;135:1205–13.
Pejić B, Budinski I, van Schaik J, Blagojević J. Wspólne kryjówki, ale nie ektopasożyty: wysoka specyficzność żywiciela u much nietoperzy i roztoczy skrzydeł Miniopterus schreibersii I Rhinolophus ferrumequinum (Ssaki: Chiroptera). Curr Zool. 2022;68:507–16.
Szentiványi T, Estók P, Földvári M. Lista kontrolna stowarzyszeń żywicieli europejskich muszek nietoperzy (Diptera: Nycteribiidae, Streblidae). zootaksa. 2016;4205:101–26.
Kerth G. Przyczyny i konsekwencje socjalizacji nietoperzy. biologia. 2008;58:737–46.
Webber QMR, Willis C. Społeczność, pasożyty i patogeny u nietoperzy. W: Ortega J., wyd. Soc nietoperze. Cham: Springer; 2016. s. 1–301.
Google Scholar
Bendjeddou ML, Loumassine HA, Scheffler I, Bouslama Z, Amr Z. Ektopasożyty nietoperzy (Nycteribiidae, Streblidae, Siphonaptera, Heteroptera, Mesostigmata, Argasidae i Ixodidae) z Algierii. J Vector Ecol. 2017;42:13–23.
Rodrigues L, Palmeirim JM. Zachowanie wędrowne nietoperza Schreibera: kiedy, gdzie i dlaczego nietoperze jaskiniowe migrują w regionie Morza Śródziemnego? J.Zool. 2008;274:116–25.
Dufresnes C, Dutoit L, Brelsford A, Goldstein-Witsenburg F, Clément L, López-Baucells A, et al. Wnioskowanie o strukturze genetycznej, gdy jest jej mało: genetyka populacji a genomika zagrożonego nietoperza Miniopterus schreibersii przez Europę. Przedstawiciel nauki 2023;13:1523.
Hutterer R, Ivanova T, Mayer-Cords C, Rodrigues L. Migracje nietoperzy w Europie: przegląd danych dotyczących pasm i literatury. Bonn: Naturschutz und biologische Vielfalt; 2005.
Pejić B, Budinski I, Paunović M, Karapandža B, Josipović J. Veliki potkovičar, Rhinolophus ferrumequinum, Podkowiec większy. W: Stanković D, Paunović M, Raković M, wyd. Atlas migratornih ptica i slepih miševa Srbije. Prirodnjački muzej u Beogradu; 2018. s. 472–477.
Paunović M, Karapandža B, Budinski I, Stamenković S. Fauna slepih miševa (Mammalia, Chiroptera) Srbije. Petanović R, redaktor. Srp. Akad. Nauka. ja Umet. 2020.
Borner J, Pick C, Thiede J, Kolawole OM, Kingsley MT, Schulze J i in. Filogeneza pasożytów krwi hemosporydów ujawniona w podejściu wielogenowym. Mol Phylogenet Evol. 2016;94:221–31.
Theodor O. Ilustrowany katalog kolekcji Nycteribiidae (Diptera) Rothschilda w British Museum (historia naturalna). Londyn: British Museum (historia naturalna); 1967.
Google Scholar
Perkins S, Schall JJ. Filogeneza molekularna pasożytów malarii odzyskana z sekwencji genów cytochromu b. PubMed J Parazytol. 2002;88:972–8.
Martinsen ES, Perkins SL, Schall JJ. Filogeneza trzech genomów pasożytów malarii (Plazmodium i blisko spokrewnione rodzaje): ewolucja cech historii życia i zmiany żywiciela. Mol Phylogenet Evol. 2008;47:261–73.
Edgar RC. MUSCLE: dopasowanie wielu sekwencji z dużą dokładnością i dużą przepustowością. Kwasy nukleinowe Res. 2004;32:1792–7.
Leigh JW, Bryant D. POPART: w pełni funkcjonalne oprogramowanie do budowy sieci haplotypów. Meth Ecol Evol. 2015;6:1110–6.
Duval L, Robert V, Csorba G, Hassanin A, Randrianarivelojosia M, Walston J i in. Wielokrotna zmiana żywiciela pasożytów Haemosporidia u nietoperzy. Malar J. 2007;6:157.
Schaer J, Perkins SL, Decher J, Leendertz FH, Fahr J, Weber N i in. Duża różnorodność pasożytów malarii nietoperzy z Afryki Zachodniej i ścisły związek z gryzoniami Plazmodium taksony. Proc Natl Acad Sci. 2013;110:17415–9.
Obame-Nkoghe J, Rahola N, Bourgarel M, Yangari P, Prgnolle F, Maganga GD i in. Muchy nietoperzy (Diptera: Nycteribiidae i Streblidae) atakujące nietoperze jaskiniowe w Gabonie: różnorodność, dynamika i potencjalna rola w Polychromophilus melanipherus przenoszenie. Wektory pasożytów. 2016;9:333.
Rosyadi I, Shimoda H, Takano A, Yanagida T, Sato H. Izolacja i charakterystyka molekularna polichromofil spp. (Haemosporida: Plasmodiidae) z azjatyckiego nietoperza długopalczastego (Miniopterus fuliginosus) i japoński nietoperz wielkostopy (Myotis macrodactylus) w Japonii. Parazytol Res. 2022;121:2547–2559.
Ramasindrazana B, Goodman SM, Dsouli N, Gomard Y, Lagadec E, Randrianarivelojosia M, et al. polichromofil spp. (Haemosporida) u nietoperzy malgaskich: specyficzność żywiciela i spostrzeżenia na temat wektorów bezkręgowców. Malar J. 2018;17:318.
Rosskopf SP, Held J, Gmeiner M, Mordmüller B, Matsiégui PB, Eckerle I, et al. Nycteria I polichromofil Zarażenia pasożytnicze nietoperzy w środkowym Gabonie. Zainfekuj Genet Evol. 2018;68:30–4.
Rasoanoro M, Goodman SM, Randrianarivelojosia M, Rakotondratsimba M, Dellagi K, Tortosa P i in. Różnorodność, dystrybucja i czynniki napędzające polichromofil zakażenia u nietoperzy malgaskich. Malar J. 2021;20:157.
Lutz HL, Patterson BD, Kerbis Peterhans JC, Stanley WT, Webala PW, Gnoske TP i in. Zróżnicowane pobieranie próbek hemosporydian z Afryki Wschodniej ujawnia chiropterowe pochodzenie pasożytów malarii u naczelnych i gryzoni. Mol Phylogenet Evol. 2016;99:7–15.
Duval L, Mejean C, Maganga GD, Makanga BK, Mangama Koumba LB, Peirce MA i in. Hemosporydian chiroptera Polychromophilus melanipherus: ogólnoświatowy kompleks gatunkowy ograniczony do rodziny Miniopteridae. Zainfekuj Genet Evol. 2012;12:1558–66.
Burazerović J, Orlova M, Obradović M, Ćirović D, Tomanović S. Wzorce liczebności i specyficzność żywiciela ektopasożytów nietoperzy na Bałkanach Środkowych. J Med Entomol. 2018;55:20–8.
Iwanowa-Aleksandrowa N, Dundarowa H, Bojko. Ektopasożyty gatunków nietoperzy żyjących w jaskiniach w Bułgarii. Proc Zool Soc. 2022;75:463–468.
Thurber MI, Ghai RR, Hyeroba D, Weny G, Tumukunde A, Chapman CA i in. Koinfekcja i przenoszenie międzygatunkowe rozbieżnych wątrobiak rodowody w społeczności dzikich afrykańskich naczelnych. Int J Parazytol. 2013;43:613–9.
Schaer J, Perkins SL, Ejotre I, Vodzak ME, Matuschewski K, Reeder DAM. Epoletowane nietoperze owocożerne wykazują wyjątkowo wysoką infekcję a wątrobiak kompleks gatunków w Sudanie Południowym. Przedstawiciel nauki 2017;7:6928.
Schaer J, McMichael L, Gordon AN, Russell D, Matuschewski K, Perkins SL i in. Filogeneza wątrobiak pasożyty australijskich lisów latających ujawnia odrębny klad pasożytów. Int J Parazytol Pasożyty Wildl. 2018;7:207–12.
